อนาคตของวัคซีนโควิด 19 กับ ประเทศไทย

ผู้แต่ง

  • เพ็ญศิริ ภูสิงหา ศูนย์ความเป็นเลิศการวิจัยแอนติบอดี คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล
  • สุรเชษฐ์ เบญจธรรมรักษ์ ศูนย์ความเป็นเลิศการวิจัยแอนติบอดี คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล
  • ปานน้ำทิพย์ พิทักษ์สัจจะกุล ภาควิชาเวชศาสตร์สังคมและสิ่งแวดล้อม คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล
  • ยง ภู่วรวรรณ ศูนย์เชี่ยวชาญเฉพาะทางด้านไวรัสวิทยาคลินิก คณะแพทย์ศาสตร์ จุฬาลงกรณ์มหาวิทยาลัย
  • พงศ์ราม รามสูต ศูนย์ความเป็นเลิศการวิจัยแอนติบอดี คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล

คำสำคัญ:

วัคซีน,, โควิด-19

บทคัดย่อ

การระบาดของโรค COVID-19 เริ่มช่วงปลายปี พ.ศ. 2562 ที่เมือง Wuhan ประเทศจีน จนถึงปัจจุบัน (กุมภาพันธ์ 2564) ไวรัส SAR-COV-2 ได้แพร่ไปยัง 186 ประเทศทั่วโลก และก่อให้เกิดการติดเชื้อแก่ประชากร 103 ล้านคน และมีผู้เสียชีวิตถึง 2.2 ล้านคน มาตรการการกำหนดระยะห่าง และลดการเคลื่อนที่ของประชากรในประเทศ กลับเป็นการทำให้ประชากรขาดภูมิคุ้มกันต่อไวรัส SAR-COV-2 และจะแสดงอาการป่วยได้ง่ายเมื่อติดเชื้อ ผู้สูงอายุและผู้ที่มีโรคเรื้อรังจะมีความเสี่ยงสูงต่อการเสียชีวิตถ้าติดเชื้อ ต้องมีการฉีดวัคซีนให้ครอบคลุมเพื่อสร้างภูมิคุ้มกันกลุ่ม (Herd immunity) ให้ได้อย่างน้อย 60% ของประชากร จึงจะยุติการระบาดของโรคได้ ประชากรโลกส่วนใหญ่กำลังรอที่จะได้ฉีดวัคซีน COVID-19 ที่ปลอดภัยและมีประสิทธิภาพ ซึ่งวัคซีน COVID-19 ที่มีประสิทธิภาพ ควรสามารถกระตุ้นการสร้าง ทั้งแอนติบอดียับยั้งไวรัส SARS-CoV-2  และ T cells ในปริมาณที่มากพอที่ป้องกันโรคได้ดี ถึงแม้ว่าวัคซีนที่ให้ทางระบบทางเดินหายใจ จะสามารถกระตุ้นภูมิคุ้มกันโดยตรงที่ระบบทางเดินหายใจ ซึ่งจะมีประสิทธิภาพดีที่ในการกำจัด SARS-CoV-2  ในช่วงแรกของการติดเชื้อ ซึ่งเหมาะมากกับการใช้กับกลุ่มเสี่ยง แต่วิธีการให้วัคซีนทางระบบทางเดินหายใจยังด้อยกว่าวัคซีนชนิดฉีดในด้านความปลอดภัยและประสิทธิภาพ รวมทั้งอุปกรณ์การให้วัคซีนก็ยังไม่เหมาะที่จะนำไปใช้ในประเทศที่ยากจน ดังนั้นวัคซีนที่ใช้การฉีดจึงยังคงเหมาะสมที่สุด  มีการเร่งรีบในการพัฒนาวัคซีน COVID-19 ภายในไม่ถึง 1 ปี มีมากกว่า 13 ชนิด เข้าสู่ระยะที่ 3 การศึกษาในมนุษย์ และมี 4 ชนิดที่สรุปผลเบื้องต้นแล้ว ชนิดของวัคซีนที่มีการศึกษามีร่วม 10 ชนิด แต่ขณะนี้ที่มีการผ่านระยะ 3 และยอมให้ใช้ในภาวะฉุกเฉินแล้วมี 4 ชนิด คือ 1. ชนิดเชื้อตาย (Inactivated Vaccine) มีวัคซีนของจีน Sinovac, Sinopharm และกำลังจะมีของอินเดียอีก 1 ชนิด 2. ใช้ไวรัสเป็นตัวนำ (Virus Vector) เข้าสู่เซลล์ให้สร้างแอนติเจน กระตุ้นสร้างภูมิต้านทาน ได้แก่ วัคซีน Oxford-AstraZeneca ของอังกฤษ, Sputnik V ของรัสเซีย, Cansino ของจีน 3. วัคซีน mRNA ใช้ mRNA ห่อด้วยไขมันนำเข้าเซลล์ ได้แก่ วัคซีนของ Moderna, Pfizer 4. วัคซีนชนิดโปรตีนบางส่วน (Subunit Vaccine) ใช้ให้สิ่งมีชีวิตระดับเซลล์ในการสร้างโปรตีน นำโปรตีนมาประกอบกับสารกระตุ้นภูมิต้านทาน ได้แก่ วัคซีน Novavax ของอเมริกา และยังมีของจีนอีกบริษัทหนึ่งที่อังฮุย ขณะนี้ที่ผ่านการศึกษาวัคซีน ทุกชนิดป้องกันความรุนแรงของโรคได้ การศึกษาที่ผ่านมาเป็นการสรุปผลเบื้องต้น โดยเป้าหมายกลุ่มผู้ได้รับวัคซีนจริงและหลอกมีผู้ป่วยติดเชื้อหรือมีอาการ 90-100 คน แต่ตามเป้าหมายจะสิ้นสุดการศึกษาต้องมีผู้ป่วยที่ 160 คน ผลการรายงานเบื้องต้น  จึงเป็นการศึกษาประสิทธิภาพระยะสั้น หลังให้วัคซีนไม่เกิน 3 เดือน การศึกษาเหล่านี้ไม่ได้บอกประสิทธิภาพในการป้องกันระยะยาวเช่น 6 เดือนถึง 1 ปี การป้องกันโรคยิ่งนานขึ้น ประสิทธิภาพอาจน้อยลง หรือเท่าเดิมหรือมากกว่า ปัจจุบันยังต้องติดตาม เช่นเดียวกับอาการข้างเคียงวัคซีนจำเป็นต้องติดตามผลข้างเคียงระยะยาวเช่นเดียวกัน การให้ประชากรมีภูมิต้านทานจากการติดเชื้อ หรือได้รับวัคซีนอย่างน้อย 60% จำเป็นต้องใช้เวลาเป็นปีหรือหลายปี การยุติการระบาดจะต้องใช้เวลาเป็นปีหรือหลายปี มาตรการการป้องกัน การดำรงชีวิตในชีวิตวิถีใหม่ยังคงต้องดำเนินต่อไปอย่างมีระเบียบวินัย ความอดทน เห็นกับส่วนรวมหรือสังคม รวมทั้งการแบ่งปัน ยังมีความจำเป็นต้องดำเนินต่อไป  ดังนั้นจึงยังต้องสวมหน้ากากอนามัย ล้างมือ และกำหนดระยะห่างของบุคคลและสังคมต่อไป

References

Van Vinh Chau N, Lam VT, Dung NT, Yen LM, Minh NNQ, Hung LM, et al. The Natural History and Transmission Potential of Asymptomatic Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 Infection. Clinical Infectious Diseases. 2020;71(10):2679-87.

Long QX, Tang XJ, Shi QL, Li Q, Deng HJ, Yuan J, et al. Clinical and immunological assessment of asymptomatic SARS-CoV-2 infections. Nature medicine. 2020;26(8):1200-4.

Sungnak W, Huang N, Bécavin C, Berg M, Queen R, Litvinukova M, et al. SARS-CoV-2 entry factors are highly expressed in nasal epithelial cells together with innate immune genes. Nature medicine. 2020;26(5):681-7.

Zou X, Chen K, Zou J, Han P, Hao J, Han Z. Single-cell RNA-seq data analysis on the receptor ACE2 expression reveals the potential risk of different human organs vulnerable to 2019-nCoV infection. Frontiers of medicine. 2020;14(2):185-92.

Hoffmann M, Kleine-Weber H, Schroeder S, Krüger N, Herrler T, Erichsen S, et al. SARS-CoV-2 Cell Entry Depends on ACE2 and TMPRSS2 and Is Blocked by a Clinically Proven Protease Inhibitor. Cell. 2020;181(2):271-80.e8.

Sallenave JM, Guillot L. Innate Immune Signaling and Proteolytic Pathways in the Resolution or Exacerbation of SARS-CoV-2 in Covid-19: Key Therapeutic Targets? Frontiers in immunology. 2020;11:1229.

Puelles VG, Lütgehetmann M, Lindenmeyer MT, Sperhake JP, Wong MN, Allweiss L, et al. Multiorgan and Renal Tropism of SARS-CoV-2. The New England journal of medicine. 2020;383(6):590-2.

de Wit E, van Doremalen N, Falzarano D, Munster VJ. SARS and MERS: recent insights into emerging coronaviruses. Nature reviews Microbiology. 2016;14(8):523-34.

Sariol A, Perlman S. Lessons for COVID-19 Immunity from Other Coronavirus Infections. Immunity. 2020;53(2):248-63.

Prompetchara E, Ketloy C, Palaga T. Immune responses in COVID-19 and potential vaccines: Lessons learned from SARS and MERS epidemic. Asian Pacific journal of allergy and immunology. 2020;38(1):1-9.

Zhou R, To KK, Wong YC, Liu L, Zhou B, Li X, et al. Acute SARS-CoV-2 Infection Impairs Dendritic Cell and T Cell Responses. Immunity. 2020;53(4):864-77.e5.

Remy KE, Mazer M, Striker DA, Ellebedy AH, Walton AH, Unsinger J, et al. Severe immunosuppression and not a cytokine storm characterizes COVID-19 infections. JCI insight. 2020;5(17).

Blanco-Melo D, Nilsson-Payant BE, Liu WC, Uhl S, Hoagland D, Møller R, et al. Imbalanced Host Response to SARS-CoV-2 Drives Development of COVID-19. Cell. 2020;181(5):1036-45.e9.

Merad M, Martin JC. Pathological inflammation in patients with COVID-19: a key role for monocytes and macrophages. Nature reviews Immunology. 2020;20(6):355-62.

Zhou Y, Fu B, Zheng X, Wang D, Zhao C, qi Y, et al. Pathogenic T cells and inflammatory monocytes incite inflammatory storm in severe COVID-19 patients. Natl Sci Rev. 2020:nwaa041.

Zhou F, Yu T, Du R, Fan G, Liu Y, Liu Z, et al. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study. The Lancet. 2020;395.

Liao M, Liu Y, Yuan J, Wen Y, Xu G, Zhao J, et al. Single-cell landscape of bronchoalveolar immune cells in patients with COVID-19. Nature medicine. 2020;26(6):842-4.

Ni L, Ye F, Cheng ML, Feng Y, Deng YQ, Zhao H, et al. Detection of SARS-CoV-2-Specific Humoral and Cellular Immunity in COVID-19 Convalescent Individuals. Immunity. 2020;52(6):971-7.e3.

Grifoni A, Weiskopf D, Ramirez SI, Mateus J, Dan JM, Moderbacher CR, et al. Targets of T Cell Responses to SARS-CoV-2 Coronavirus in Humans with COVID-19 Disease and Unexposed Individuals. Cell. 2020;181(7):1489-501.e15.

Shen C, Wang Z, Zhao F, Yang Y, Li J, Yuan J, et al. Treatment of 5 Critically Ill Patients With COVID-19 With Convalescent Plasma. Jama. 2020;323(16):1582-9.

Seow J, Graham C, Merrick B, Acors S, Steel KJA, Hemmings O, et al. Longitudinal evaluation and decline of antibody responses in SARS-CoV-2 infection. medRxiv. 2020:2020.07.09.20148429.

To KK, Tsang OT, Leung WS, Tam AR, Wu TC, Lung DC, et al. Temporal profiles of viral load in posterior oropharyngeal saliva samples and serum antibody responses during infection by SARS-CoV-2: an observational cohort study. The Lancet Infectious diseases. 2020;20(5):565-74.

Liu W, Liu L, Kou G, Zheng Y, Ding Y, Ni W, et al. Evaluation of Nucleocapsid and Spike Protein-Based Enzyme-Linked Immunosorbent Assays for Detecting Antibodies against SARS-CoV-2. Journal of clinical microbiology. 2020;58(6).

Long QX, Liu BZ, Deng HJ, Wu GC, Deng K, Chen YK, et al. Antibody responses to SARS-CoV-2 in patients with COVID-19. Nature medicine. 2020;26(6):845-8.

Lecomte J, Cainelli-Gebara V, Mercier G, Mansour S, Talbot PJ, Lussier G, et al. Protection from mouse hepatitis virus type 3-induced acute disease by an anti-nucleoprotein monoclonal antibody. Brief report. Archives of virology. 1987;97(1-2):123-30.

Nakanaga K, Yamanouchi K, Fujiwara K. Protective effect of monoclonal antibodies on lethal mouse hepatitis virus infection in mice. Journal of virology. 1986;59(1):168-71.

Padoan A, Sciacovelli L, Basso D, Negrini D, Zuin S, Cosma C, et al. IgA-Ab response to spike glycoprotein of SARS-CoV-2 in patients with COVID-19: A longitudinal study. Clinica chimica acta; international journal of clinical chemistry. 2020;507:164-6.

Yu H-Q, Sun B-Q, Fang Z-F, Zhao J-C, Liu X-Y, Li Y-M, et al. Distinct features of SARS-CoV-2-specific IgA response in COVID-19 patients. Eur Respir J. 2020;56(2):2001526.

Cao WC, Liu W, Zhang PH, Zhang F, Richardus JH. Disappearance of antibodies to SARS-associated coronavirus after recovery. The New England journal of medicine. 2007;357(11):1162-3.

Wu LP, Wang NC, Chang YH, Tian XY, Na DY, Zhang LY, et al. Duration of antibody responses after severe acute respiratory syndrome. Emerging infectious diseases. 2007;13(10):1562-4.

Tay MZ, Poh CM, Rénia L, MacAry PA, Ng LFP. The trinity of COVID-19: immunity, inflammation and intervention. Nature reviews Immunology. 2020;20(6):363-74.

Chen K, Kolls JK. T cell-mediated host immune defenses in the lung. Annual review of immunology. 2013;31:605-33.

Arunachalam PS, Charles TP, Joag V, Bollimpelli VS, Scott MKD, Wimmers F, et al. T cell-inducing vaccine durably prevents mucosal SHIV infection even with lower neutralizing antibody titers. Nature medicine. 2020;26(6):932-40.

Zhao J, Zhao J, Perlman S. T cell responses are required for protection from clinical disease and for virus clearance in severe acute respiratory syndrome coronavirus-infected mice. Journal of virology. 2010;84(18):9318-25.

Haddadi S, Vaseghi-Shanjani M, Yao Y, Afkhami S, D'Agostino MR, Zganiacz A, et al. Mucosal-Pull Induction of Lung-Resident Memory CD8 T Cells in Parenteral TB Vaccine-Primed Hosts Requires Cognate Antigens and CD4 T Cells. Frontiers in immunology. 2019;10:2075.

Jeyanathan M, Yao Y, Afkhami S, Smaill F, Xing Z. New Tuberculosis Vaccine Strategies: Taking Aim at Un-Natural Immunity. Trends in immunology. 2018;39(5):419-33.

Turner DL, Bickham KL, Thome JJ, Kim CY, D'Ovidio F, Wherry EJ, et al. Lung niches for the generation and maintenance of tissue-resident memory T cells. Mucosal immunology. 2014;7(3):501-10.

Zhao J, Zhao J, Mangalam AK, Channappanavar R, Fett C, Meyerholz DK, et al. Airway Memory CD4(+) T Cells Mediate Protective Immunity against Emerging Respiratory Coronaviruses. Immunity. 2016;44(6):1379-91.

Bolles M, Deming D, Long K, Agnihothram S, Whitmore A, Ferris M, et al. A double-inactivated severe acute respiratory syndrome coronavirus vaccine provides incomplete protection in mice and induces increased eosinophilic proinflammatory pulmonary response upon challenge. Journal of virology. 2011;85(23):12201-15.

Tseng CT, Sbrana E, Iwata-Yoshikawa N, Newman PC, Garron T, Atmar RL, et al. Immunization with SARS coronavirus vaccines leads to pulmonary immunopathology on challenge with the SARS virus. PloS one. 2012;7(4):e35421.

Haq K, McElhaney JE. Immunosenescence: Influenza vaccination and the elderly. Current opinion in immunology. 2014;29:38-42.

Braun J, Loyal L, Frentsch M, Wendisch D, Georg P, Kurth F, et al. SARS-CoV-2-reactive T cells in healthy donors and patients with COVID-19. Nature. 2020;587(7833):270-4.

Ahmed SF, Quadeer AA, McKay MR. Preliminary Identification of Potential Vaccine Targets for the COVID-19 Coronavirus (SARS-CoV-2) Based on SARS-CoV Immunological Studies. Viruses. 2020;12(3).

Le Bert N, Tan AT, Kunasegaran K, Tham CYL, Hafezi M, Chia A, et al. SARS-CoV-2-specific T cell immunity in cases of COVID-19 and SARS, and uninfected controls. Nature. 2020;584(7821):457-62.

Mateus J, Grifoni A, Tarke A, Sidney J, Ramirez SI, Dan JM, et al. Selective and cross-reactive SARS-CoV-2 T cell epitopes in unexposed humans. Science (New York, NY). 2020;370(6512):89-94.

Liu L, Wei Q, Lin Q, Fang J, Wang H, Kwok H, et al. Anti-spike IgG causes severe acute lung injury by skewing macrophage responses during acute SARS-CoV infection. JCI insight. 2019;4(4).

Diamond MS, Pierson TC. The Challenges of Vaccine Development against a New Virus during a Pandemic. Cell host & microbe. 2020;27(5):699-703.

Buchholz UJ, Bukreyev A, Yang L, Lamirande EW, Murphy BR, Subbarao K, et al. Contributions of the structural proteins of severe acute respiratory syndrome coronavirus to protective immunity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2004;101(26):9804-9.

Rauch S, Jasny E, Schmidt KE, Petsch B. New Vaccine Technologies to Combat Outbreak Situations. Frontiers in immunology. 2018;9:1963.

Moreno-Fierros L, García-Silva I, Rosales-Mendoza S. Development of SARS-CoV-2 vaccines: should we focus on mucosal immunity? Expert opinion on biological therapy. 2020;20(8):831-6.

Belyakov IM, Ahlers JD. What role does the route of immunization play in the generation of protective immunity against mucosal pathogens? Journal of immunology (Baltimore, Md : 1950). 2009;183(11):6883-92.

Netea MG, Giamarellos-Bourboulis EJ, Domínguez-Andrés J, Curtis N, van Crevel R, van de Veerdonk FL, et al. Trained Immunity: a Tool for Reducing Susceptibility to and the Severity of SARS-CoV-2 Infection. Cell. 2020;181(5):969-77.

Szabo PA, Miron M, Farber DL. Location, location, location: Tissue resident memory T cells in mice and humans. Science immunology. 2019;4(34).

Xing Z, Afkhami S, Bavananthasivam J, Fritz DK, D'Agostino MR, Vaseghi-Shanjani M, et al. Innate immune memory of tissue-resident macrophages and trained innate immunity: Re-vamping vaccine concept and strategies. Journal of leukocyte biology. 2020;108(3):825-34.

Yao Y, Jeyanathan M, Haddadi S, Barra NG, Vaseghi-Shanjani M, Damjanovic D, et al. Induction of Autonomous Memory Alveolar Macrophages Requires T Cell Help and Is Critical to Trained Immunity. Cell. 2018;175(6):1634-50.e17.

Almazán F, DeDiego ML, Sola I, Zuñiga S, Nieto-Torres JL, Marquez-Jurado S, et al. Engineering a replication-competent, propagation-defective Middle East respiratory syndrome coronavirus as a vaccine candidate. mBio. 2013;4(5):e00650-13.

Hou Y, Meulia T, Gao X, Saif LJ, Wang Q. Deletion of both the Tyrosine-Based Endocytosis Signal and the Endoplasmic Reticulum Retrieval Signal in the Cytoplasmic Tail of Spike Protein Attenuates Porcine Epidemic Diarrhea Virus in Pigs. Journal of virology. 2019;93(2):e01758-18.

Jimenez-Guardeño JM, Regla-Nava JA, Nieto-Torres JL, DeDiego ML, Castaño-Rodriguez C, Fernandez-Delgado R, et al. Identification of the Mechanisms Causing Reversion to Virulence in an Attenuated SARS-CoV for the Design of a Genetically Stable Vaccine. PLoS Pathog. 2015;11(10):e1005215.

Netland J, DeDiego ML, Zhao J, Fett C, Álvarez E, Nieto-Torres JL, et al. Immunization with an attenuated severe acute respiratory syndrome coronavirus deleted in E protein protects against lethal respiratory disease. Virology. 2010;399(1):120-8.

Menachery VD, Yount BL, Jr., Josset L, Gralinski LE, Scobey T, Agnihothram S, et al. Attenuation and restoration of severe acute respiratory syndrome coronavirus mutant lacking 2'-o-methyltransferase activity. Journal of virology. 2014;88(8):4251-64.

Draper SJ, Heeney JL. Viruses as vaccine vectors for infectious diseases and cancer. Nature reviews Microbiology. 2010;8(1):62-73.

Afkhami S, Yao Y, Xing Z. Methods and clinical development of adenovirus-vectored vaccines against mucosal pathogens. Mol Ther Methods Clin Dev. 2016;3:16030.

Cohen J. Narrow path charted for editing genes of human embryos. Science (New York, NY). 2020;369(6509):1283.

Zhu FC, Li YH, Guan XH, Hou LH, Wang WJ, Li JX, et al. Safety, tolerability, and immunogenicity of a recombinant adenovirus type-5 vectored COVID-19 vaccine: a dose-escalation, open-label, non-randomised, first-in-human trial. Lancet. 2020;395(10240):1845-54.

Abou-Alfa GK, Pandya SS, Zhu AX. Ivosidenib for advanced IDH1-mutant cholangiocarcinoma - Authors' reply. Lancet Oncol. 2020;21(8):e371.

Zhu FC, Wurie AH, Hou LH, Liang Q, Li YH, Russell JB, et al. Safety and immunogenicity of a recombinant adenovirus type-5 vector-based Ebola vaccine in healthy adults in Sierra Leone: a single-centre, randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 2 trial. Lancet. 2017;389(10069):621-8.

Zhang S, Huang W, Zhou X, Zhao Q, Wang Q, Jia B. Seroprevalence of neutralizing antibodies to human adenoviruses type-5 and type-26 and chimpanzee adenovirus type-68 in healthy Chinese adults. J Med Virol. 2013;85(6):1077-84.

Baden LR, Walsh SR, Seaman MS, Tucker RP, Krause KH, Patel A, et al. First-in-human evaluation of the safety and immunogenicity of a recombinant adenovirus serotype 26 HIV-1 Env vaccine (IPCAVD 001). J Infect Dis. 2013;207(2):240-7.

Anywaine Z, Whitworth H, Kaleebu P, Praygod G, Shukarev G, Manno D, et al. Safety and Immunogenicity of a 2-Dose Heterologous Vaccination Regimen With Ad26.ZEBOV and MVA-BN-Filo Ebola Vaccines: 12-Month Data From a Phase 1 Randomized Clinical Trial in Uganda and Tanzania. J Infect Dis. 2019;220(1):46-56.

Mercado NB, Zahn R, Wegmann F, Loos C, Chandrashekar A, Yu J, et al. Single-shot Ad26 vaccine protects against SARS-CoV-2 in rhesus macaques. Nature. 2020;586(7830):583-8.

van Doremalen N, Lambe T, Spencer A, Belij-Rammerstorfer S, Purushotham JN, Port JR, et al. ChAdOx1 nCoV-19 vaccine prevents SARS-CoV-2 pneumonia in rhesus macaques. Nature. 2020;586(7830):578-82.

Folegatti PM, Ewer KJ, Aley PK, Angus B, Becker S, Belij-Rammerstorfer S, et al. Safety and immunogenicity of the ChAdOx1 nCoV-19 vaccine against SARS-CoV-2: a preliminary report of a phase 1/2, single-blind, randomised controlled trial. Lancet. 2020;396(10249):467-78.

Wang H, Zhang Y, Huang B, Deng W, Quan Y, Wang W, et al. Development of an Inactivated Vaccine Candidate, BBIBP-CorV, with Potent Protection against SARS-CoV-2. Cell. 2020;182(3):713-21.e9.

Gao Q, Bao L, Mao H, Wang L, Xu K, Yang M, et al. Development of an inactivated vaccine candidate for SARS-CoV-2. Science (New York, NY). 2020;369(6499):77-81.

Mou H, Raj VS, van Kuppeveld FJ, Rottier PJ, Haagmans BL, Bosch BJ. The receptor binding domain of the new Middle East respiratory syndrome coronavirus maps to a 231-residue region in the spike protein that efficiently elicits neutralizing antibodies. Journal of virology. 2013;87(16):9379-83.

Guo Y, Sun S, Wang K, Zhang S, Zhu W, Chen Z. Elicitation of immunity in mice after immunization with the S2 subunit of the severe acute respiratory syndrome coronavirus. DNA Cell Biol. 2005;24(8):510-5.

Zhou Y, Jiang S, Du L. Prospects for a MERS-CoV spike vaccine. Expert Rev Vaccines. 2018;17(8):677-86.

Oscherwitz J. The promise and challenge of epitope-focused vaccines. Hum Vaccin Immunother. 2016;12(8):2113-6.

Naskalska A, Dabrowska A, Nowak P, Szczepanski A, Jasik K, Milewska A, et al. Novel coronavirus-like particles targeting cells lining the respiratory tract. PloS one. 2018;13(9):e0203489.

Pardi N, Hogan MJ, Porter FW, Weissman D. mRNA vaccines - a new era in vaccinology. Nat Rev Drug Discov. 2018;17(4):261-79.

Jackson NAC, Kester KE, Casimiro D, Gurunathan S, DeRosa F. The promise of mRNA vaccines: a biotech and industrial perspective. NPJ Vaccines. 2020;5:11.

Paganoni S, Macklin EA, Hendrix S, Berry JD, Elliott MA, Maiser S, et al. Trial of Sodium Phenylbutyrate-Taurursodiol for Amyotrophic Lateral Sclerosis. The New England journal of medicine. 2020;383(10):919-30.

Smith TRF, Patel A, Ramos S, Elwood D, Zhu X, Yan J, et al. Immunogenicity of a DNA vaccine candidate for COVID-19. Nat Commun. 2020;11(1):2601.

Yu J, Tostanoski LH, Peter L, Mercado NB, McMahan K, Mahrokhian SH, et al. DNA vaccine protection against SARS-CoV-2 in rhesus macaques. Science (New York, NY). 2020;369(6505):806.

Downloads

เผยแพร่แล้ว

30-04-2021

How to Cite

ภูสิงหา เ. ., เบญจธรรมรักษ์ ส. ., พิทักษ์สัจจะกุล ป. ., ภู่วรวรรณ ย. ., & รามสูต พ. . (2021). อนาคตของวัคซีนโควิด 19 กับ ประเทศไทย. วารสารวิทยาศาสตร์สุขภาพและสาธารณสุข วชิระภูเก็ต, 1(1), 1–22. สืบค้น จาก https://he03.tci-thaijo.org/index.php/VCHPK/article/view/3914